Астрономия и микроскопия

Для того, что бы наблюдать метафазные хромосомы их надо остановить на определенной фазе митоза, а именно на стадии метафазы, для это используют цитостатики ( колхицин, винбластин винкристин, циклофосфан и тд.)
В букальном эпителии наблюдать это явление будет сложно, опять же нужно культивировать клетки что бы они начали делиться.

_________________
мой сайт http://labx.narod.ru/
Polyvar, Zeiss Imager Z1, Jenaval, Микротом Reichert Jung Biocut 2030, К.М.Н. 14.03.02

Нормальная кровь ( морфология). Читает академик Воробьев. Может быть интересным даже не специалисту.

_________________
мой сайт http://labx.narod.ru/
Polyvar, Zeiss Imager Z1, Jenaval, Микротом Reichert Jung Biocut 2030, К.М.Н. 14.03.02

Спасибо Юрий.Очень интересно и полезно.

Юрий. ОГРОМНОЕ Спасибо!
Материал великолепный.
Супер.

_________________
мой сайт http://labx.narod.ru/
Polyvar, Zeiss Imager Z1, Jenaval, Микротом Reichert Jung Biocut 2030, К.М.Н. 14.03.02

Хорошие видеоматериалы. К сожалению ,последний материал ,не подходит к домашним условиям, сколько там "склянок" ,спиртов ,печек ,для этого нужна целая лаборатория ,где же её дома найдешь .Чисто больше в познавательных целях .
Микротом понравился, качественный такой . Микроскопы , улыбнуло от них ,простые ,советские биоламы .Повезло деткам , они заняты интересным делом, правда бинокуляры , хотя бы ау-12 могли и подкупить ,быстро глаза от монокуляра устают.

МС-1 ,вот это да....на заднем плане и УМТП-3 виднеется

_________________
Оборудование
/микроскопы Сarl Zeiss Axiophot, Carl Zeiss Jena Jenaval Interphako, Микмед-1
/микротомы Leitz 1512, МС-2/

Если можно ,расскажите ,что это ?

микротомы, видео отличное вообще-спасибо большое

_________________
Оборудование
/микроскопы Сarl Zeiss Axiophot, Carl Zeiss Jena Jenaval Interphako, Микмед-1
/микротомы Leitz 1512, МС-2/

Ну вопрос дискуссионный)) о возможности в домашних условиях изготовить полноценный гистологический препарат.Все обилие термостатов говорит только, что данная лаборатория с большим оборотом ( проводки) гистологического материала. В в домашних условиях хватит и места на обычном письменном столе. А в место термостата можно использовать любым нагревательным прибором отрегулированным на температуру 52-56С.

_________________
мой сайт http://labx.narod.ru/
Polyvar, Zeiss Imager Z1, Jenaval, Микротом Reichert Jung Biocut 2030, К.М.Н. 14.03.02

Мне наоборот показалось. откуда у них большой оборот? обычная ВУЗовская лаборатория.

_________________
Оборудование
/микроскопы Сarl Zeiss Axiophot, Carl Zeiss Jena Jenaval Interphako, Микмед-1
/микротомы Leitz 1512, МС-2/

Я ,не имел в виду ,что нельзя приготовить ,просто так как они там рассказывают и показывают сложно будет дома , а если упростить ,то да

_________________
мой сайт http://labx.narod.ru/
Polyvar, Zeiss Imager Z1, Jenaval, Микротом Reichert Jung Biocut 2030, К.М.Н. 14.03.02

player13cccp, все вполне реально.

Вот пример "домашнего" продольно-вертикального среза брюшка мухи (далеко до идеала, но лиха беда начало...)

Как делал.

1. Поймал муху

2. Запустил в бюксу с фиксатором ФАА (можно - в формидрон) и варварски утопил. Проплавала там с неделю (не было времени уделить бедолаге внимание)

3. Проводка для обезвоживания: этиловый спирт 70% -> 85% ->96%, изопропиловый спирт 1-ая смена, изопропиловый спирт 2-ая смена, ксилол, ксилол пополам с парафином (на нагревательном столике, ок. 40 град), парафин (на нагревательном столике, ок. 60 град). Манипуляции с ксилолом и парафином в бюксе с притертой пробкой на открытом балконе.

4. Заливка в парафин, парафин аптечный, чистый, для пластификации по совету старших товарищей добавлял немного димексида.

5. Резка (подача микрометром, нож - опасная бритва). Перед резкой опять же по совету старших товарищей охлаждал парафиновый блок с обжимкой в морозилке.

6. Срезы вылавливал на покровные стекла (предметные не лезут по высоте в мои баночки). Стекла предварительно обезжиривал: сперва они час-другой стояли в растворе 2% едкого натра, затем мылись (в резиновых перчатках), затем выстаивались от полусуток в насыщенном растворе двухромовокислого калия в аккумуляторном электролите (36% серная к-та), затем промывка в воде.

7. Депарафинирование: три смены ксилола, две смены 96% спирта (для удаления остатков ксилола)

8. Обводнение: этиловый спирт 85% -> 70% -> 50% -> 30% -> дист. вода.

9. Окраска (гематоксилина не имею, красил тем, что было под руками).

10. После окраски и промывки - вода пополам с глицерином, затем - чистый глицерин.

11. Между предметным и покровным стеклами глицерин; препараты временные, т.к. это пробы.

Итак, что вышло: срезы порядка 30 мкм (толстовато), оценено по шкале микровинта.

Фото 1 - окраска толуидиновым синим, 20х/0,4

Фото 2 - окраска толуидиновым синим + эозин, 20х/0,4

Фото 3 - окраска смесью хризоидина и сафранина + водный синий, 40х/0,75 ВИ

На фото показано сочленение хитиновых пластинок (кутикулы) на брюшке насекомого. Виден заход пластинок одна за другую, это обеспечивает подвижность брюшка.

Насекомое - какое-то летучее,мельче мухи. Продольно-вертикальный срез. Препарат временный, приготовлен аналогично предыдущим, но после окраски (толуидиновый синий, эозин) снова обезвожен изопропиловым спиртом, просветлен ксилолом и помещен в иммерсионном масле под покровное стекло.

Объектив ПЛАН 9х