Астрономия и микроскопия

Согласен,но уж больно обильно поливать приходится, чтобы проник как следует. Лучше шприцом с иглой вдоль щели проходить.

_________________
МБИ-3, МББ-1А, МБИ-11, Б-70С1, PZO MB-30, КФ-4, ОИ-13, ОИ-17, ОИ-19, ОИ-21, ОИ-35, KPI-2, MPI-3, Gamma конденсор, 5.0 Мп камера.

У меня был столик МБИ-3 с закисшим кольцом в котором поворачивается так, что ключом типа газового не мог сорвать, съемник тоже не помог.
Вымачивание тоже не давало результата (пробовал керосин, вд-40, уайтспирит, бензин Б-70, дизельное топливо), зазор на кольце очень маленький.
Помогло замораживание в морозилке до -19, потом поливание кипятком - потом под кран с горячей водой на пол часика потом без сушки сразу в морозилку.
После третьего захода удалось сорвать кольцо съемником.

Видимо вода проникла в зазор а при замерзании образовавшийся лед сорвал его.

_________________
Мой зоопарк:
Биолам (АУ-12 КОН-3)
АУ-12 (мби-3, ОИ-14)
Люмам-И1 (АУ-26 МФН-11 КФ-4)
МБИ-15 (ПК-3, без План-Апо)
Carl Zeiss Amplival
Микмед 2 вар. 2
PZO DIC, МФА, 3D Gamma
and etc

Я опускал этот столик в полиэтиленовом кульке в кипяток, и основание оттаяло.

_________________
МБИ-3, МБИ-11, МБС-1, Микмед-2, Микмед-5, Zeiss Nf/ЛОМО, PZO Biolar PI

Если еще такой закисший попадется попробую так, это проще получится.

_________________
Мой зоопарк:
Биолам (АУ-12 КОН-3)
АУ-12 (мби-3, ОИ-14)
Люмам-И1 (АУ-26 МФН-11 КФ-4)
МБИ-15 (ПК-3, без План-Апо)
Carl Zeiss Amplival
Микмед 2 вар. 2
PZO DIC, МФА, 3D Gamma
and etc

Здравствуйте.
Как-то спрашивал на этом форуме, про то, не повредит ли просветлению ультрафиолетовая, бактерицидная лампа. Мне коротко ответили, что для убирания желтизны канадского бальзама, от времени, применяют жесткий ультрафиолет.
То есть, это по идее не вредит просветлению.

Теперь возник вопрос, как раз про эту желтизну.
Если кто-то может сказать подробнее, для чего, как это делается, опишите пожалуйста.
Какая лампа, сколько времени примерно.

Не портится ли бальзам в склейках вообще, от ультрафиолета?

Спасибо.

Я сомневаюсь что жесткий ультрафилет до него доберется. Если взять например бактерицидную лампу то 1мм стекла почти полностью подавит ее УФ излучение 253,7нм а там на него приходится 80 с лишним процентов излучения.
Поэтому однозначно не бактерицидная лампа.
Да и стоит учесть что не вся оптика клеится пихтовым(канадским) бальзамом.

_________________
Мой зоопарк:
Биолам (АУ-12 КОН-3)
АУ-12 (мби-3, ОИ-14)
Люмам-И1 (АУ-26 МФН-11 КФ-4)
МБИ-15 (ПК-3, без План-Апо)
Carl Zeiss Amplival
Микмед 2 вар. 2
PZO DIC, МФА, 3D Gamma
and etc

А как же тогда люминесцентные объективы?
Кстати говоря, где-то в интернете видел, что канадский бальзам очень сильно поглощает УФ лучи. По идее, люминесцентные объективы чем-то другим должны склеивать.
Но стекло то там ведь всё ровно не кварцевое.
И в то же время, производится освещение через объектив.

Люминисцентные чем конкретно склеиваются не знаю, а вот УФ объективы клеем УФ235 или акриловым.
Стоит еще учесть что для возбуждения люминисценции используется длинна волны 360-500нм то есть в пределах пропускания обычным стеклом.
Стекло начинает сильно давить ультрафилоет примерно с 340-370 (в зависимости от толщины) и короче.

_________________
Мой зоопарк:
Биолам (АУ-12 КОН-3)
АУ-12 (мби-3, ОИ-14)
Люмам-И1 (АУ-26 МФН-11 КФ-4)
МБИ-15 (ПК-3, без План-Апо)
Carl Zeiss Amplival
Микмед 2 вар. 2
PZO DIC, МФА, 3D Gamma
and etc

Читал, что при люминесцентных исследованиях, существует проблема выцветания препарата, во время наблюдения.
Правильно ли понимаю, что диапазон пропускаемый стеклом, к примеру 360нм, может привести к выцветания образца? У меня есть диод 3 вт 360нм. Очень сомневаюсь, что он способен что-то выцвететь. Хотя не пробовал.

Да правильно, зависит от красителя, освещенности, и длительности излучения, может быть и светодиода для чего то хватит, при длительном освещении.
360 это примерно на границе ослабления, да и стекла разные бывают, хз во сколько раз ослабляется излучение у вас.

_________________
Мой зоопарк:
Биолам (АУ-12 КОН-3)
АУ-12 (мби-3, ОИ-14)
Люмам-И1 (АУ-26 МФН-11 КФ-4)
МБИ-15 (ПК-3, без План-Апо)
Carl Zeiss Amplival
Микмед 2 вар. 2
PZO DIC, МФА, 3D Gamma
and etc

Попробую поставить на ночь. Через какое-то время, завтра – после завтра, напишу, изменилось ли что-то.
Собираюсь проделать это на призме бинокулярной насадки, и окулярах.
У меня есть 15х окуляры ЛОМО, не так давно купил 20х. Так в 20х картинка значительно ярче и светлее. А в насадке, смотря какой спектр освещения. Если освещать нейтральным, или тёплым, то не заметно. А если 10.000к, то сильно поглощение голубого цвета в правом канале.

Нужно наверное на ночь оставить в подсветке 360нм светодиод. Не думаю, что он нанесёт вред.

А вы думаете это из за склейки?
Может просто просветление такое?
У всех одинаково желтит один канал.

_________________
Мой зоопарк:
Биолам (АУ-12 КОН-3)
АУ-12 (мби-3, ОИ-14)
Люмам-И1 (АУ-26 МФН-11 КФ-4)
МБИ-15 (ПК-3, без План-Апо)
Carl Zeiss Amplival
Микмед 2 вар. 2
PZO DIC, МФА, 3D Gamma
and etc

Не знаю, думаю, нужно попробовать. Если хуже не будет.

Для этого в комплект приборов с люминесценцией идет защитный прозрачный фильтр от УФ, или даже просто непрозрачная крышка. Если отходишь от микроскопа, то ставишь эту крышку. Сейчас, если светодиод стоит, то его просто можно выключить. А вот дуговые лампы нельзя туда сюда включать.

_________________
МБИ-3, МБИ-11, МБС-1, Микмед-2, Микмед-5, Zeiss Nf/ЛОМО, PZO Biolar PI

Вы про бинокуляры? У меня на цейссе 1,6 одинаковые каналы были (продал его), на китайском бинокуляре от Микмед-5 тоже одинаковые. На АУ-26 почти одинаковые (но там и склеек нет).

_________________
МБИ-3, МБИ-11, МБС-1, Микмед-2, Микмед-5, Zeiss Nf/ЛОМО, PZO Biolar PI