Астрономия и микроскопия

Форум сайта "Два Стрельца"
Текущее время: 25 апр 2024, 20:27

Часовой пояс: UTC + 3 часа




Начать новую тему Ответить на тему  [ Сообщений: 760 ]  На страницу Пред.  1 ... 8, 9, 10, 11, 12, 13, 14 ... 51  След.
Автор Сообщение
СообщениеДобавлено: 18 мар 2014, 20:05 
Не в сети

Зарегистрирован: 28 ноя 2009, 20:24
Сообщения: 1114
Откуда: Омск
белых писал(а):
планирую сохранять мелких насекомых в пузырьках с ватой на дне слегка пропитанной 5 процентным
раствором формалина
важно чтобы пузырек не содержал жидкости-- в случае разбивания

возможно что это не лучший способ -- подскажите может быть есть лучше варрианты

но необходима- герметичность и не высыхание препарата- безопастность для детей

есть- фенол -спирт -формалин- глицерин
возможно другие доступные химикаты


Вы планируете создавать энтомологическую коллекцию? Тогда есть куча методик, начиная от сбора, создания морилки и т.д.
Если насекомые только на короткое время для фотографирования, то вполне достаточно пластмассовой коробочки со смоченной водой ваткой на дне - и всё это хранится в морозильном отделении холодильника.

_________________
Мой блог: http://microcosmos555.blogspot.ru/


Вернуться к началу
 Профиль  
 

СообщениеДобавлено: 19 мар 2014, 11:51 
Не в сети
Аватара пользователя

Зарегистрирован: 05 дек 2012, 22:15
Сообщения: 751
Откуда: Одесса
белых писал(а):
подскажите ... планирую сохранять мелких насекомых в пузырьках ... важно чтобы пузырек не содержал жидкости - в случае разбивания

Я использую баночки из-под гуаши (для детского рисования, объем 15 - 30 мл, достаются от дочки), они из прозрачной пластмассы (полиэтилен?) с герметично закручивающимися крышками.


Вернуться к началу
 Профиль  
 
СообщениеДобавлено: 22 мар 2014, 00:08 
Не в сети

Зарегистрирован: 03 мар 2014, 05:38
Сообщения: 1060
подскажите?

обнаружил запас красителей

метиловый зеленый
метиловый красный
метиловый оранжевый
бромфеноловый синий
ализариновый красный
флуоресцеин

возможно ли использовать их в окраске растительных или животных препаратов?
например для окраски гусеници потерявшей цвет в спирте--- и др применения

спасибо


Вернуться к началу
 Профиль  
 
СообщениеДобавлено: 22 мар 2014, 00:13 
Не в сети
Аватара пользователя

Зарегистрирован: 11 мар 2009, 11:12
Сообщения: 901
Откуда: Россия, г. Москва
белых писал(а):
подскажите?

обнаружил запас красителей

метиловый зеленый
метиловый красный
метиловый оранжевый
бромфеноловый синий
ализариновый красный
флуоресцеин

возможно ли использовать их в окраске растительных или животных препаратов?

спасибо


Реактивы и препараты для микроскопии. Справочник. Фрайштат Д.М. -1980 г.
http://yadi.sk/d/X4KpYknc2w_Xa

Е.В. СЕЛИВАНОВ КРАСИТЕЛИ В БИОЛОГИИ И МЕДИЦИНЕ СПРАВОЧНИК БАРНАУЛ•2003
http://molbiol.ru/forums/uploads/lit/Krasiteli_v_biologii_i_medicine.pdf

_________________
мой сайт http://labx.narod.ru/
Polyvar, Zeiss Imager Z1, Jenaval, Микротом Reichert Jung Biocut 2030, К.М.Н. 14.03.02


Вернуться к началу
 Профиль  
 
СообщениеДобавлено: 14 апр 2014, 17:19 
Не в сети
Аватара пользователя

Зарегистрирован: 05 дек 2012, 22:15
Сообщения: 751
Откуда: Одесса
Движение в клетках эпидермиса лука.

phpBB [video]


Живые клетки эпидермиса лука. Фрагмент пленки клеток эпидермиса отделен от мякоти, помещен на час в отфильтрованную отстоянную водопроводную воду, затем на 30 мин. в раствор нейтрального красного (5 капель 1% р-ра на 20 мл. дист.воды, подщелоченной до рН=7 содой). Прямо в этом растворе образец и помещен под покровное стекло.

Нейтральный красный прокрасил клеточные стенки в коралловый цвет, но в сами клетки не проник. Движение клеточного содержимого видно только вблизи клеточных стенок. Интересно, что частицы в движутся не "абы как", а по определенным "дорогам".

Объектив 90х/1,25 МИ. Во время съемки смещал микровинтом фокус по глубине.


Вернуться к началу
 Профиль  
 
СообщениеДобавлено: 14 апр 2014, 17:35 
Не в сети
Аватара пользователя

Зарегистрирован: 25 мар 2014, 18:06
Сообщения: 989
Откуда: Москва, Кунцево. Корытово(по выходным)
Сэм-59 писал(а):
Движение в клетках эпидермиса лука.


Отличное видео!


Вернуться к началу
 Профиль  
 
СообщениеДобавлено: 14 апр 2014, 18:11 
Не в сети
Аватара пользователя

Зарегистрирован: 31 дек 2012, 13:23
Сообщения: 1927
Откуда: Волгоград
Сэм-59 писал(а):
Движение в клетках эпидермиса лука...
Нейтральный красный прокрасил клеточные стенки в коралловый цвет, но в сами клетки не проник. Движение клеточного содержимого видно только вблизи клеточных стенок. Интересно, что частицы в движутся не "абы как", а по определенным "дорогам"...


Интересное видео. "Определенные дороги" - тяжи цитоплазмы. Ими вся клетка пронизана, но большую часть объема занимает вакуоль.

_________________
МБИ-3, МБИ-11, МБС-2, МБИ-4, МИН-8, МББ-1А, КФ-1, КФ-4, МФА-2


Вернуться к началу
 Профиль  
 
СообщениеДобавлено: 14 апр 2014, 21:55 
Не в сети
Аватара пользователя

Зарегистрирован: 05 дек 2012, 22:15
Сообщения: 751
Откуда: Одесса
Rasalam писал(а):
"Определенные дороги" - тяжи цитоплазмы. Ими вся клетка пронизана, но большую часть объема занимает вакуоль.

По идее, вакуоль должна была приобрести диффузное розовое окрашивание. А окрасились только стенки. Границы вакуоли можно угадать только по траектории частиц. Что-то не так сделал...


Вернуться к началу
 Профиль  
 
СообщениеДобавлено: 14 апр 2014, 22:51 
Не в сети
Аватара пользователя

Зарегистрирован: 31 дек 2012, 13:23
Сообщения: 1927
Откуда: Волгоград
Сэм-59 писал(а):
Rasalam писал(а):
"Определенные дороги" - тяжи цитоплазмы. Ими вся клетка пронизана, но большую часть объема занимает вакуоль.

По идее, вакуоль должна была приобрести диффузное розовое окрашивание. А окрасились только стенки. Границы вакуоли можно угадать только по траектории частиц. Что-то не так сделал...

Мне кажется, вы все правильно сделали, правда окрасились не столько стенки, сколько пристеночный слой цитоплазмы. Если порассуждать ... нейтральный красный является прижизненным красителем (его насколько знаю в основном в зоологии используют), концентрация красителя в цитоплазме очень небольшая, поэтому в тонком слое цитоплазмы (тяжи - они же мостики, также пристеночный слой цитоплазмы, который параллельно плоскости препарата) окраска не заметна. Если смотреть "сверху" то слой у стенок получается на толщину клетки (перпендикулярно плоскости препарата), окраска более выражена. Ток цитоплазмы видим за счет включений (в т.ч. окрашенных нейтральным красным). Вакуоль таким способом окрасить вероятно можно, наверное просто дольше подержать в красителе, чтобы он успел через 2 мембраны накопиться в заметной концентрации в вакуоли, а затем подержать клетки в среде без красителя, чтобы он успел вымыться из цитоплазмы, но не успел из вакуоли. Как то так :)

_________________
МБИ-3, МБИ-11, МБС-2, МБИ-4, МИН-8, МББ-1А, КФ-1, КФ-4, МФА-2


Вернуться к началу
 Профиль  
 
СообщениеДобавлено: 14 апр 2014, 23:01 
Не в сети
Аватара пользователя

Зарегистрирован: 05 дек 2012, 22:15
Сообщения: 751
Откуда: Одесса
Вот еще один подход, тут окрашивание вакуоли видно достаточно хорошо. Вакуоль занимает почти весь объем клетки. Движение видно в уголках и у самой стенки. Разные клетки окрашиваются с разной интенсивностью.

Объектив 40х/0,65.


Вложения:
Вакуоли.jpg
Вакуоли.jpg [ 137.55 КБ | Просмотров: 9250 ]
Вернуться к началу
 Профиль  
 
СообщениеДобавлено: 14 апр 2014, 23:03 
Не в сети
Аватара пользователя

Зарегистрирован: 31 дек 2012, 13:23
Сообщения: 1927
Откуда: Волгоград
Сэм-59 писал(а):
Вот еще один подход, тут окрашивание вакуоли видно достаточно хорошо. Вакуоль занимает почти весь объем клетки. Движение видно в уголках и у самой стенки. Разные клетки окрашиваются с разной интенсивностью.

Объектив 40х/0,65.


Дольше держали ?

_________________
МБИ-3, МБИ-11, МБС-2, МБИ-4, МИН-8, МББ-1А, КФ-1, КФ-4, МФА-2


Вернуться к началу
 Профиль  
 
СообщениеДобавлено: 15 апр 2014, 01:00 
Не в сети
Аватара пользователя

Зарегистрирован: 05 дек 2012, 22:15
Сообщения: 751
Откуда: Одесса
Эпидерма с той же луковицы, что и в прошлом опыте, снята и помещена в воду одновременно с ней. Просто пробыла в воде на несколько часов дольше. А в красителе находилась даже меньше. Если будет время, могу проделать опыты с хронометражем, посмотреть оптимальное время пребывания.
Тут еще такая проблема: эпидермис с верхней части луковичного "листа" после отделения и помещения в воду свертывается в трубочку; чтобы положить его на стекло, приходится обращаться с ним не совсем деликатно, а для прижизненных наблюдений это не есть хорошо.
Да, и еще разный оттенок у разных клеток: более сиреневый получается в более кислой среде, а с желтизной - в более щелочной (по свойствам нейтрального красного как кислотно-щелочного индикатора). Может, это из-за травмирования некоторых клеток при расправлении на предметном стекле?


Вернуться к началу
 Профиль  
 
СообщениеДобавлено: 17 апр 2014, 22:38 
Не в сети
Аватара пользователя

Зарегистрирован: 05 дек 2012, 22:15
Сообщения: 751
Откуда: Одесса
Решил попробовать изготовить парафиновые срезы, т.к. нежные ткани без заливки резать очень трудно.

На пробу взял корень фаленопсиса (хотя его можно было бы резать и без заливки, он достаточно плотный). Зафиксировал в ФАА. Проводка: спирт 70%, спирт 85%, спирт 96%, две смены изопропилового спирта, ксилол, раствор парафина в ксилоле, расплавленный парафин. Парафин использовал аптечный. Затем заливка в цилиндры диаметром 18 мм (под размер держателя моего "микротома", сделал два блока).

Делал поперечные срезы. Резал опасной бритвой, угол заточки 20 градусов. Проблема: срез скручивается в трубочку. Чем тоньше срез, тем сильнее. Даже при немедленном переносе в теплую воду далеко не каждый срез расправляется, особенно которые тоньше 20 мкм. Немного подогревал парафиновые блоки (до 30-35 градусов), но это не сильно помогало. Лезвие, разумеется, смачивал. Может, кто-до даст совет, как с этим бороться.

Срезы вылавливал из воды на обезжиренное покровное стекло. После высыхания срезы держались на стекле. Вся дальнейшая обработка была с покровным стеклом - мне так удобнее обрабатывать, в мои баночки предметные не помещаются. Отмывка от парафина в трех сменах ксилола. Проводка с спиртах 96%, 85%, 70%, 50%, 30%. Окраска "почти по Этцольду" - как в предыдущих моих опытах. Обезвоживание в глицерине, заключение в глицерин-желатину.


Вложения:
Комментарий к файлу: Фото 1. Центральный фрагмент среза. Объектив ПЛАН 9х/0,2.
Фаленопсис5.jpg
Фаленопсис5.jpg [ 185.11 КБ | Просмотров: 9203 ]
Комментарий к файлу: Фото 2. Центральный фрагмент среза. Объектив 20х/0,4.
Фаленопсис2.jpg
Фаленопсис2.jpg [ 153.91 КБ | Просмотров: 9203 ]
Комментарий к файлу: Фото 3. Краевой фрагмент среза. Объектив ПЛАН 9х/0,2.
Фаленопсис4.jpg
Фаленопсис4.jpg [ 115.25 КБ | Просмотров: 9203 ]
Комментарий к файлу: Фото 4. Краевой фрагмент среза. Объектив 20х/0,4.
Фаленопсис3.jpg
Фаленопсис3.jpg [ 135.18 КБ | Просмотров: 9203 ]
Вернуться к началу
 Профиль  
 
СообщениеДобавлено: 17 апр 2014, 23:08 
Не в сети
Аватара пользователя

Зарегистрирован: 11 мар 2009, 11:12
Сообщения: 901
Откуда: Россия, г. Москва
Сэм-59 писал(а):
Решил попробовать изготовить парафиновые срезы, т.к. нежные ткани без заливки резать очень трудно.

На пробу взял корень фаленопсиса (хотя его можно было бы резать и без заливки, он достаточно плотный). Зафиксировал в ФАА. Проводка: спирт 70%, спирт 85%, спирт 96%, две смены изопропилового спирта, ксилол, раствор парафина в ксилоле, расплавленный парафин. Парафин использовал аптечный. Затем заливка в цилиндры диаметром 18 мм (под размер держателя моего "микротома", сделал два блока).

Делал поперечные срезы. Резал опасной бритвой, угол заточки 20 градусов. Проблема: срез скручивается в трубочку. Чем тоньше срез, тем сильнее. Даже при немедленном переносе в теплую воду далеко не каждый срез расправляется, особенно которые тоньше 20 мкм. Немного подогревал парафиновые блоки (до 30-35 градусов), но это не сильно помогало. Лезвие, разумеется, смачивал. Может, кто-до даст совет, как с этим бороться.

Срезы вылавливал из воды на обезжиренное покровное стекло. После высыхания срезы держались на стекле. Вся дальнейшая обработка была с покровным стеклом - мне так удобнее обрабатывать, в мои баночки предметные не помещаются. Отмывка от парафина в трех сменах ксилола. Проводка с спиртах 96%, 85%, 70%, 50%, 30%. Окраска "почти по Этцольду" - как в предыдущих моих опытах. Обезвоживание в глицерине, заключение в глицерин-желатину.


К сожалению не могу сказать с полной уверенностью так как не знаком с заливкой растительного материала, но дело в парафине, его точка плавления должна лежать от 48 до 56 градусов.
Попробуйте парафин прогреть несколько раз основательно( начнет дымить), а затем вылив в плоское охлажденное с низу судно. или добавить воска до 3-4 % от массы.
Будьте аккуратны с прогреванием парафина, может загореться.

_________________
мой сайт http://labx.narod.ru/
Polyvar, Zeiss Imager Z1, Jenaval, Микротом Reichert Jung Biocut 2030, К.М.Н. 14.03.02


Вернуться к началу
 Профиль  
 
СообщениеДобавлено: 17 апр 2014, 23:26 
Не в сети
Аватара пользователя

Зарегистрирован: 05 дек 2012, 22:15
Сообщения: 751
Откуда: Одесса
Юрий писал(а):
...дело в парафине, его точка плавления должна лежать от 48 до 56 градусов.Попробуйте парафин прогреть несколько раз основательно( начнет дымить), а затем вылив в плоское охлажденное с низу судно. или добавить воска до 3-4 % от массы.Будьте аккуратны с прогреванием парафина, может загореться.
Спасибо, Юрий. Как появится время, прежде всего замеряю температуру плавления парафина.


Вернуться к началу
 Профиль  
 
Показать сообщения за:  Поле сортировки  
Начать новую тему Ответить на тему  [ Сообщений: 760 ]  На страницу Пред.  1 ... 8, 9, 10, 11, 12, 13, 14 ... 51  След.

Часовой пояс: UTC + 3 часа


Кто сейчас на конференции

Сейчас этот форум просматривают: Bing [Bot], ИНО и гости: 212


Вы не можете начинать темы
Вы не можете отвечать на сообщения
Вы не можете редактировать свои сообщения
Вы не можете удалять свои сообщения
Вы не можете добавлять вложения

Найти:
Перейти:  
Создано на основе phpBB® Forum Software © phpBB Group
Русская поддержка phpBB
Яндекс.Метрика